Articles

Bloedplasma versus serum: wat is juist voor het bemonsteren van circulerende membraanmicrovesicles bij menselijke proefpersonen? | Annalen van de reumatische aandoeningen

  • membraanmicrovesikels
  • serum
  • plasma
  • coagulatie
  • lupus

We hebben met grote belangstelling het artikel gelezen van Kato en collega ’s over de” apoptose-afgeleide membraanblaasjes drijven de cgas–STING route en versterken de type I IFN productie in systemische lupus erythematosus”.,1 Wij zijn echter bezorgd dat de auteurs uitsluitend bloedserum hebben bestudeerd, dat wil zeggen dat alle bloedmonsters van hun patiënten met lupus en gezonde controles ex vivo zijn gecoaguleerd vóór de analyse.

ten minste drie belangrijke veranderingen kunnen optreden in de populatie van membraanmicrovesikels (MVs) tijdens de coagulatie in een reageerbuis. Ten eerste neemt een subset van circulerende MVs deel aan, en wordt verbruikt door, stolling., Bijvoorbeeld, studies van onze groep en anderen toonden aan dat meer dan de helft van het totale membraanmembraan MVs in bloed plasma2 of de in vitro gegenereerde mvs3 4 fosfatidylserine (PS) op hun oppervlak vertonen. PS-positieve MV ‘ s zijn procoagulant ten opzichte van PS-negatieve2 3 5 omdat PS een katalytisch membraanoppervlak vormt dat de assemblage en katalyse van stollingsfactorcomplexen bevordert.3 6 Dit geldt met name voor apoptotische MVs,3 5 7 8 aangezien blootstelling aan het membraanoppervlak van PS Een kenmerk is van celapoptosis.,Daarom kunnen PS-positieve MV ‘ s bij voorkeur betrokken zijn bij de vorming van stolsels in de bemonsteringsbuis wanneer bloed wordt afgenomen zonder anticoagulantia. De resterende MV ’s in de serumbuis zijn mogelijk niet representatief voor de oorspronkelijke populatie van MV’ s die in de circulatie waren.4

een tweede verandering tijdens stolling ex vivo is het ontstaan van nieuwe populatie MV ‘ s die oorspronkelijk niet in de circulatie werden gepresenteerd. Bloedplaatjes worden geactiveerd tijdens de vorming van stolsels in een reageerbuis en geven in vitro kunstmatig gegenereerde MVs vrij tijdens het bemonsteringsproces.,10 bloedplaatjes-afgeleide MVS gegenereerd in de monsterbuis kan verantwoordelijk zijn voor 50% van de MVS in serum.10 andere cellen in het bloed kunnen ook MVS afgeven tijdens de ex vivo stolling. Deze ‘kunstmatige’ MV ‘ s in serum kunnen niet de pathofysiologische conditie van het circulerende bloed vertegenwoordigen bij patiënten met lupus en gezonde controles.

een derde verandering tijdens de stolling is de mogelijke splitsing van eiwitten op MVs door proteasen, dat wil zeggen trombine, gegenereerd tijdens de stollingscascade. Dit probleem is niet op grote schaal bestudeerd in het onderzoeksgebied van MV, maar het is bekend op andere gebieden., Trombine verteert bijvoorbeeld apolipoproteïne-B in fragmenten, 11 en de ‘intacte’ lipoproteïnen worden geïsoleerd uit plasma, niet uit serum.

naar onze mening moet bloedplasma12, bereid in aanwezigheid van anticoagulantia, worden gebruikt in onderzoek naar MV, omdat het gebruik van de “oorspronkelijke circulerende” MV ’s en de productie van de “kunstmatige ” MV’ s vermijdt, evenals blootstelling aan proteasen, tijdens stolling ex vivo in de serummonsterbuisjes. Maar de studieresultaten met serum, zoals gebruikt door Kato et al en andere groepen, moeten worden bevestigd met bloedplasma., Artefacten veroorzaakt door de stolling van bloed in een reageerbuis kunnen de resultaten en conclusies van alle studies van circulerende MVS in klinische translationele onderzoeken grotendeels beïnvloeden. Daarom is de bloedbemonstering van het circulerende MVS membraan bij menselijke proefpersonen een belangrijk punt dat onder de onderzoekers die klinische translationele onderzoeken uitvoeren moet worden verduidelijkt.

    1. Kato Y,
    2. Park J,
    3. Takamatsu H, et al

    ., Apoptosis-afgeleide membraanblaasjes drijven de cgas-STEEKWEG aan en verbeteren type I IFN productie in systemische lupus erythematosus. Ann Rheum Dis 2018; 77: 1507 — 2015.doi: 10.1136 / annrheumdis-2018-212988

    1. Shet AS,
    2. Aras O,
    3. Gupta K, et al

    . Sikkelbloed bevat Weefsel factor-positieve microdeeltjes afgeleid van endotheelcellen en monocyten. Blood 2003; 102: 2678-83.doi: 10.1182 / bloed-2003-03-0693

    1. Liu M-L,
    2. Reilly MP,
    3. Casasanto P, et al

    ., Cholesterolverrijking van menselijke monocyten / macrofagen induceert blootstelling aan het oppervlak van fosfatidylserine en de afgifte van biologisch actieve weefselfactorpositieve microvesikels. Arterioscler Tromb Vasc Biol 2007; 27: 430-5.doi: 10.1161 / 01.ATV.0000254674.47693.e8

    1. Latham SL,
    2. Tiberti n,
    3. Gokolparsadh n, et al

    . Immuno-analyse van microdeeltjes: probing at the limits of detection. Sci Rep 2015; 5.doi: 10.,1038 /srep16314

    1. Li M,
    2. Yu D,
    3. Williams KJ, et al

    . Tabaksrook veroorzaakt de vorming van procoagulant microvesikels uit menselijke monocyten/macrofagen. Arterioscler Tromb Vasc Biol 2010; 30: 1818-24.doi: 10.1161 / ATVBAHA.110.209577

    1. Zwaal RFA,
    2. Comfurius P,
    3. Bevers EM

    . Blootstelling aan het oppervlak van fosfatidylserine in pathologische cellen. Cell Mol Life Sci 2005; 62: 971-88.doi: 10.,1007 / s00018-005-4527-3

    1. Casciola-Rosen l,
    2. Rosen A,
    3. Petri M, et al

    . Oppervlakteblebs op apoptotische cellen zijn plaatsen met verhoogde procoagulerende activiteit: implicaties voor stollingsgebeurtenissen en antigene verspreiding in systemische lupus erythematosus. Proc Natl Acad Sci U S A 1996; 93: 1624-9.doi: 10.1073 / pnas.93.4.1624

    1. Stampfuss JJ,
    2. Censarek P,
    3. Bein D, et al

    ., Membraanmilieu eerder dan weefselfactoruitdrukking bepaalt trombinevorming die door monocytic cellen wordt teweeggebracht die apoptosis ondergaan. J Leukoc Biol 2008; 83: 1379-81.doi: 10.1189 / jlb.1207843

    1. Balasubramanian K,
    2. Mirnikjoo B,
    3. Schroit AJ

    . Gereguleerde externalisatie van fosfatidylserine aan de celoppervlakte: implicaties voor apoptosis. J Biol Chem 2007; 282: 18357-64.doi: 10.1074 / jbc.M700202200

    1. Witwer KW,
    2. Buzás EI,
    3. Bemis LT, et al

    ., Standaardisatie van monsterverzameling, isolatie en analysemethoden in extracellulair vesikel onderzoek. J Extracellulaire Blaasjes 2013; 2. doi: doi: 10.3402/jev.v2i0. 20360

    1. Cardin AD,
    2. Witt KR,
    3. Chao J, et al

    . Afbraak van apolipoproteïne B-100 van humane plasma low density lipoproteïnen door weefsel en plasmakallikreinen. J Biol Chem 1984; 259: 8522-8.

    1. Liu m,
    2. Xu H,
    3. Bashir M, et al

    ., Pro-inflammatoire microvesicles bij patiënten met cutane lupus erythematosus. J Invest Dermatol 2014; 134.