Articles

Osocze krwi a surowica: co jest właściwe do pobierania próbek krążących mikrowieży błonowych u ludzi? / Annals of the Reumatic Diseases

  • membrane microvesicles
  • surowica
  • osocze
  • koagulacja
  • toczeń

z dużym zainteresowaniem przeczytaliśmy artykuł Kato i współpracowników dotyczący „pęcherzyki membranowe pochodzące z apoptozy napędzają szlak CGAS-STING i zwiększają produkcję IFN typu i w toczniu układowym rumieniowaty”.,1 obawiamy się jednak, że autorzy badali wyłącznie surowicę krwi, czyli wszystkie próbki krwi od swoich pacjentów z toczniem i zdrowymi kontrolami były koagulowane ex vivo przed analizą.

podczas krzepnięcia w probówce mogą wystąpić co najmniej trzy główne zmiany w populacji mikrowęzłów membranowych (MVs). Po pierwsze, podzbiór krążących MVs uczestniczą w krzepnięciu i stają się konsumowane przez krzepnięcie., Na przykład, badania z naszej grupy i innych wykazały, że ponad połowa całkowitej membrany MVs w plazma2 krwi lub MVs3 4 generowane in vitro wykazują fosfatydyloseryny (PS) na ich powierzchni. PS-dodatnie MVs są prokoagulantami w stosunku do tych, które są ujemne PS2 3 5, ponieważ PS tworzy powierzchnię błony katalitycznej, która sprzyja powstawaniu i katalizie kompleksów czynników krzepnięcia.3 6 jest to szczególnie prawdziwe w przypadku apoptotycznych MVs, 3 5 7 8, ponieważ ekspozycja powierzchni membrany PS jest cechą charakterystyczną apoptozy komórkowej.,W ten sposób PS-dodatni MVs może być preferencyjnie zaangażowany w tworzenie skrzepu w probówce do pobierania próbek, gdy krew jest pobierana bez leków przeciwzakrzepowych. Pozostałe MVs w probówce surowicy mogą nie być reprezentatywne dla pierwotnej populacji MVs, które znajdowały się w obiegu.4

drugą zmianą w czasie krzepnięcia ex vivo jest pokolenie nowej populacji MVs, które nie były pierwotnie przedstawione w obiegu. Płytki krwi aktywują się podczas tworzenia skrzepu w probówce i uwalniają sztucznie wygenerowany MVs in vitro podczas procesu pobierania próbek.,10 MVs pochodzenia płytkowego generowane w probówce może stanowić 50% MVs w surowicy.Inne komórki krwi mogą również uwalniać MVs podczas krzepnięcia ex vivo. Te „sztuczne” MVs w surowicy nie mogą reprezentować stanu patofizjologicznego krwi krążącej u pacjentów z toczniem i zdrową grupą kontrolną.

trzecią zmianą podczas krzepnięcia jest możliwe rozszczepienie białek na MVs przez proteazy, czyli trombinę, powstałą podczas kaskady krzepnięcia. Problem ten nie był szeroko badany w dziedzinie badań SN, ale jest znany w innych dziedzinach., Na przykład trombina trawi apolipoproteinę-B na fragmenty, 11 i „nienaruszone” lipoproteiny są wyizolowane z osocza, a nie z surowicy.

naszym zdaniem plazma12 we krwi przygotowana w obecności antykoagulantów – powinna być stosowana w badaniach MV, ponieważ pozwala uniknąć spożycia „oryginalnego krążącego” MVs i produkcji „sztucznego” MVs, a także ekspozycji na proteazy podczas krzepnięcia ex vivo w probówkach surowicy. Ale wyniki badań z surowicy, jak stosowane przez Kato i wsp. i innych grup, powinny być potwierdzone z osocza krwi., Artefakty wywołane przez krzepnięcie krwi w probówce mogą w dużym stopniu wpływać na wyniki i wnioski z wszelkich badań membrany krążącej MVs w badaniach klinicznych translacyjnych. Dlatego pobieranie próbek krwi z membrany krążącej MVs u ludzi jest ważnym punktem, który musi zostać wyjaśniony wśród badaczy, którzy prowadzą kliniczne badania translacyjne.

    1. Kato Y,
    2. Park J,
    3. Takamatsu H, et al

    ., Pęcherzyki membranowe pochodzące z apoptozy napędzają szlak CGAS-STING i zwiększają produkcję IFN typu i w toczniu rumieniowatym układowym. Ann Rheum Dis 2018; 77: 1507–2015.doi: 10.1136 / annrheumdis-2018-212988

    1. Shet AS,
    2. Aras O,
    3. Gupta K, et al

    . Sierp krwi zawiera czynnik tkankowy dodatnie mikrocząstki pochodzące z komórek śródbłonka i monocytów. Blood 2003;102:2678-83.podoba mi się! do obserwowanych nr:101182-2003-03-0693

    1. Liu M-L,
    2. Reilly MP,
    3. Casasanto P, et al

    ., Wzbogacenie cholesterolu w ludzkich monocytach/makrofagach powoduje powierzchniową ekspozycję fosfatydyloseryny i uwalnianie biologicznie aktywnych mikrowieży z dodatnim czynnikiem tkankowym. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2007; 27:430-5.podoba mi się! do obserwowanych nr:101161ATV.0000254674.47693.e8

    1. Latham SL,
    2. Tiberti N,
    3. Gokoolparsadh N, et al

    . Immunoanaliza mikrocząstek: sondowanie w granicach wykrywalności. Sci Rep 2015;5.doi: 10.,1038/srp16314

    1. li M,
    2. Yu D,
    3. Williams KJ i in.

    . Dym tytoniowy indukuje wytwarzanie mikroorganizmów prokoagulacyjnych z ludzkich monocytów/makrofagów. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2010; 30:1818-24.podoba mi się! do obserwowanych nr: 101161110.209577

    1. Zwaal RFA,
    2. Comfurius P,
    3. Bevers EM

    . Powierzchniowa ekspozycja fosfatydyloseryny w komórkach patologicznych. Cell Mol Life Sci 2005; 62: 971-88.doi: 10.,1007 / s00018-005-4527-3

    1. Casciola-Rosen L,
    2. Rosen a,
    3. Petri M, et al

    . Powierzchniowe krwawienia na komórkach apoptotycznych są miejscami zwiększonej aktywności prokoagulacyjnej: implikacje dla zdarzeń krzepnięcia i rozprzestrzeniania antygenowego w toczniu rumieniowatym układowym. Proc Natl Acad Sci U S A 1996;93: 1624-9.podoba mi się! do obserwowanych nr: 10107393.4.1624

    1. Stampfuss JJ,
    2. Censarek P,
    3. Bein D, et al

    ., Środowisko błonowe zamiast ekspresji czynnika tkankowego determinuje powstawanie trombiny wywołane przez komórki monocytarne przechodzące apoptozę. J Leukoc Biol 2008; 83:1379-81.podoba mi się! do obserwowanych nr:1011891207843

    1. Balasubramanian K,
    2. Mirnikjoo B,
    3. Schroit AJ

    . Regulowana eksternalizacja fosfatydyloseryny na powierzchni komórki: implikacje dla apoptozy. J Biol Chem 2007;282:18357-64.podoba mi się! do obserwowanych nr:101074M700202200

    1. Witwer KW,
    2. Buzás ei,
    3. Bemis LT, et al

    ., Standaryzacja metod pobierania próbek, izolacji i analizy w badaniach pęcherzyków zewnątrzkomórkowych. J – 2013;2. podoba mi się! do obserwowanych nr:103402v2i0.20360

    1. Cardin AD,
    2. Witt KR,
    3. Chao J, et al

    . Degradacja apolipoprotein B-100 Ludzkich lipoprotein o małej gęstości przez tkanki i kallikreiny osocza. J Biol Chem 1984; 259: 8522-8.

    1. Liu M,
    2. Xu H,
    3. Bashir M, et al

    ., Prozapalne mikropęcherzyki u pacjentów z toczniem rumieniowatym skóry. J Invest Dermatol 2014;134.